Fitopatometria da murcha bacteriana em gerações de tomateiro

Ester da Silva Costa; Luís Felipe Barbosa Varjão; Ranniele Luíza Ventura Silva; Kleyton Danilo da Silva Costa

doi:10.48017/dj.v8i4.2818

Autores

Ester da Silva Costa Instituto Federal de Educação, Ciência e Tecnologia de Alagoas
Luís Felipe Barbosa Varjão Instituto Federal de Educação, Ciência e Tecnologia de Alagoas
Ranniele Luíza Ventura Silva Universidade Federal de Alagoas
Kleyton Danilo da Silva Costa Instituto Federal de Educação, Ciência e Tecnologia de Alagoas https://orcid.org/0000-0003-4631-3240

DOI:

https://doi.org/10.48017/dj.v8i4.2818

Palavras-chave:

Ralstonia pseudosolanacearum, Solanum lycopersicum, epidemia, severidade, herança

Resumo

A bactéria Ralstonia psedosolanacearum, é responsável pela murcha bacteriana do tomateiro, doença que obstrui os vasos xilemáticos e causa a morte da planta. A única medida de controle eficiente para esta doença é a utilização de cultivares resistentes. Desta forma, o objetivo deste trabalho foi realizar a fitopatometria da murcha bacteriana (Ralstonia pseudosalanacearum) em gerações de tomateiro. O delineamento experimental utilizado foi em blocos casualizados em esquema fatorial (6 x 2), com 12 tratamentos constituídos dos genitores Yoshimatsu (testemunha de resistência), IPA-7 (testemunha de suscetibilidade) e das gerações F1, F2, RC11 e RC12e dois periodos de avaliação, o 10º e 20º dia após a inoculação. Através da escala diagramática de notas da murcha bacteriana, foi realizada a fitopatometria da doença utilizando as variáveis: Incidência (INC), Índice de Murcha Bacteriana (IMB), Índice daDoença (ID), Período de Latência (PL50), Área Abaixo da Curva do Progresso da Doença (AACPD) e Taxa de Infecção (TI). Houve interação significativa entre gerações e as épocas de avaliações para as variáveis Incidência, Índice de Murcha Bacteriana e Índice da Doença. A testemunha Yoshimatsu demonstrou resistência nas duas épocas de avaliação; para as variáveis Íncidência, Índice de Murcha Bacteriana e Índice da Doença a testemunha IPA-7 e as gerações RC12 e F2 demonstraram suscetibilidade; segundo as variáveis Área Abaixo da Curva do Progresso da Doença, Taxa de Infecção e Período de Latência a murcha bacteriana (R. pseudosolanacearumem) se caracterizou como epidêmica.

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Biografia do Autor

Ester da Silva Costa, Instituto Federal de Educação, Ciência e Tecnologia de Alagoas

Graduanda em Engenharia Agronômica no Instituto Federal de Educação, Ciência e Tecnologia de Alagoas (IFAL), Piranhas, AL, Brasil.

Luís Felipe Barbosa Varjão, Instituto Federal de Educação, Ciência e Tecnologia de Alagoas

Graduando em Engenharia Agronômica no Instituto Federal de Educação, Ciência e Tecnologia de Alagoas (IFAL), Piranhas, AL, Brasil.

Ranniele Luíza Ventura Silva, Universidade Federal de Alagoas

Mestranda em Proteção de Plantas pela Universidade Federal de Alagoas – (UFAL), Maceió, AL, Brasil.

Kleyton Danilo da Silva Costa, Instituto Federal de Educação, Ciência e Tecnologia de Alagoas

Doutor em Melhoramento Genético de Plantas pela Universidade Federal Rural de Pernambuco (UFRPE); docente no Instituto Federal de Educação, Ciência e Tecnologia de Alagoas (IFAL), Piranhas, AL, Brasil.

Referências

Ahmed, W., Yang, J., Tan, Y., Munir, S., Liu, Q., Zhang, J., & Zhao, Z. (2022). Ralstonia solanacearum, a deadly pathogen: Revisiting the bacterial wilt biocontrol practices in tobacco and other Solanaceae. Rhizosphere, 21, 100479.

Amorim, E. P. P., Andrade, F. W. R., Moraes, E. M. S., Silva, J. C; Lima, R. S., & Lemos, E. E. P. (2011). Atividade antibacteriana de óleos essenciais e extratos vegetais sobre o desenvolvimento de Ralstonia solanacearum em mudas de bananeira. Revista Brasileira de Fruticultura, p. 392-398.

Castellani, A (1939). Viability of some pathogenic fungi in distilled water. Journal of Tropical Medicine and Hygiene 42:225-226.

Compêndio de estudos Conab. (2019). Tomate: Análise dos Indicadores da Produção e Comercialização no Mercado Mundial, Brasileiro e Catarinense. V.21. Brasília: Conab.

Costa, E. S., Costa, K. D. S., Filho, J. L. S. C., & Silva, M. O. (2023). Reação de resistência do tomateiro à Ralstonia solanacearum em condições de casa de vegetação. Brazilian Journal of Development, v. 9, n. 6, p. 19413-19428.

Costa, K. D. S., Santos, P. R., Santos, A. M. M., Nascimento, MR., Silva, A.M.F., Albuquerque, G. M. R., Batista, R. O., Pereira, J. W. L., & Filho, J. L. S. C. (2018). Herança de resistência a Ralstonia pseudosolanacearum em tomateiro. Euphytica 214, 137.

Costa, K. D. S., Santos, P. R., Santos, A. M. M., Silva, A. M. F., Chagas, J. T. B., Filho, J. L. S. C., Pereira, J. W. L., Silva, M. O., Silva, J. R., & Menezes, D. (2019). Controle genético da resistência do tomateiro a Ralstonia solanacearum. Euphytica, 215, 136.

Elphinstone, J. G., Allen, C., Prior, P., & Hayward, A. C. (2005). Bacterial wilt disease and the Ralstonia solanacearum species complex. American Phytopathological Society (APS Press).

Empig, L. T; Calub, A. G; Katigbak, M. M; & Deanon Júnior, J. R. (1962). Screening tomato, egg plantand Pepper varieties and strains for bacterial wilt (Pseudomonas solanacearum) resistance. Philippine Agriculturist, v. 46, p. 303-314.

Félix, K. C. S., Souza, E. B., Michereff, S. J., & Mariano, R. L. R. (2012). Survival of Ralstonia solanacearum in infected tissues of Capsicum annuum and in soils of the state of Pernambuco, Brazil. Phytoparasitica, v.40, n.1, p.53-62, 2012

Ferreira, D. F. (2013). Sisvar: sistema de análise de variância. Lavras: UFLa/DEX, 1999. e-ISSN 1983-4063-www. agro. ufg. br/pat-Pesq. Agropec. Trop., Goiânia, v. 43, n. 4. out./dez, p. 400-407.

Fontes, P. C. R; Nick, C. (2019). Olericultura Teoria e Prática - 2ª Edição, UFV, p.611.

Gyawali, S., Verma, R. P. S.; KUMAR, S., Bhardwaj, S. C., Gangwar, O. P., Selvakumar, R., Shekhawat, P. S., Rehman, & S., Sharma-Poudyal, D. (2018). Seed lingand adult-plants tage resistance of a world collection of barley genoty pestostripe rust. Journal of Phytopathology, v. 166, n. 1, p. 18-27.

Hayward, A.C. (1991). Biology and epidemiology of bacterial wilt caused by Pseudomonas solanacearum. Annual review of phytopathology, 29(1), 65-87.

Ingel, B., Caldwell, D., Duong, F., Parkinson, D.Y., Mcculloh, K. A., Iyer-pascuzzi, A. S., & Lowe-Power, T. M. (2022). Revisitando a fonte dos sintomas da murcha: a microtomografia computadorizada de raios X fornece evidências diretas de que a biomassa de Ralstonia obstrui os vasos do xilema. PhytoFrontiers™, v. 2, n. 1, pág. 41-51,

Kelman, A., & Sequeira, L. (1995) Root–to–root spread of Pseudomonas solanacearum. Phytopathology, 55:304–309.

Lebeau, Aurore., Daunay, M. C., Frary, A., Palloix, A., WANG, J. F., Dintinger, J., & Prior, P. (2011). Bacterial wilt resistance in tomato, pepper, and eggplant: genetic resources respond to diverses trains in the Ralstonia solanacearum species complex. Phytopathology, v. 101, n. 1, p. 154-165.

Lee, I., Kim, Y. S., Kim, J. W., & Park, D. H. (2020). Genetic and pathogenic characterization of bacterial wilt pathogen, Ralstonia pseudosolanacearum (Ralstonia solanacearum Phylotype I), on roses in Korea. The Plant Pathology Journal, 36(5), 440.

Lopes, C. A., Boiteux, L. S., & Eschemback, V. (2015) Eficácia relativa de porta-enxertos comerciais de tomateiro no controle da murcha-bacteriana. Horticultura Brasileira, v. 33, p. 125-130.

Mamphogoro, T. P., Babalola, O. O., & Aiyegoro, O. A. (2020). Sustainable management strategies for bacterial wilt of sweet peppers (Capsicum annuum) and other Solanaceous crops. Journal of Applied Microbiology, 129(3), 496-508.

Manda, R. R., Addanki, V. A., & Srivastava, S. (2020). Bacterial wilt of solanaceous crops. Int. J. Chem. Stud, v. 8, n. 6, p. 1048-1057.

Marcuzzo, L. L., Duarte, T. S., Rosa Neto, A. J., & Hoffmann, F. (2016). Effect of potassium phosphite and fungicides in the control of Cercospora leaf spot in sugarbeet caused by Cercospora beticola. Summa Phytopathologica, 42(2), 186-187.

McKinney, H. (1923). Influence of soil temperature and moisture on infection of wheat seedlings by helmin. J. agric. Res, 26, 195.

Morgado, H. S., Lopes, C. A., & Takatsu, A. (1992). Avaliação de genótipos de berinjela para resistência a murcha-bacteriana. Horticultura Brasileira, 10(2), 77-79.

Neri, G. A., Santos, A. A., Firmiano, S. A. C., Freitas, A. S., Alcantra, E., & Rezende, R. M. (2019). fertilizante orgânico comercial na redução do crescimento micelial de Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici do tomateiro. Revista da Universidade Vale do Rio Verde, 16(3).

Nick, C., & Silva, D. J. H. (2016). Melhoramento de tomate. Melhoramento de hortaliças. Viçosa: UFV, 396-431.

Nielsen, L. W., & Haynes, F. L. (1960). Resistance in Solanum tuberosum to Pseudomonas solanacearum. American Potato Journal, 37(8), 260-267.

Petrucelli, A., Alves, M. R., & Gianotti, F. (2022). ESTUDO DE VIABILIDADE DE UMA AGROINDÚSTRIA DE TOMATES E POLPAS NA CIDADE DE TAQUARITINGA-SP. Revista Interface Tecnológica, 19(2), 797-809.

Rani, V., Prasanna, R. & Kaushik, R. (2022). Prospecting the significance of methane-utilizing bacteria in agriculture. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 38(10), 176.

Rava, C. A., & Sartorato, A. (1994). Conceitos básicos sobre doenças de plantas. ((EMBRAPA-CNPAF. Documentos, 50).)

Rodrigues, R. R., Pizetta, S. C., Jaeggi, M. E. P. C., Rocha, R. S., Silva, R. K. G., Cruz, D. P., Pereira, I. M., Batista, J. N., Rocha, J. G., Parajara, M. C., Entringer, G. C., Gravina, G. A., Daher, R. F., Souza, A. G., Monteiro, E. C., Mateus, V. F., & Capetini, S. A. (2020). Cultivo do tomateiro em ambiente protegido sob diferentes tensões de água no solo. Research, Society and Development, 9(11), 1-28.

Safdarpour, F., & Khodakaramian, G. (2018). Avaliação das atividades antagonistas e promotoras do crescimento de plantas de bactérias endofíticas do tomate em desafio com Verticilliumdahliae em condições in vitro e in vivo. Biological Journal of Microorganism, v. 7, n. 28, pág. 77-90.

Shaner, G., & Finney, R. E. (1977). O efeito da fertilização com nitrogênio na expressão da resistência ao míldio lento no trigo Knox. Fitopatologia, v. 67, n. 8, pág. 1051-1056.

Sharma, K., Iruegas-Bocardo, F., Abdurahman, A., Alcalá-Briseño, RI, Garrett, KA, Goss, EM, ... & Munguti, F. (2022). Cepas de Ralstonia de regiões produtoras de batata do Quênia revelam dois filotipos e clonalidade epidêmica de cepas do filotipo II Sequevar 1. Fitopatologia®, 112 (10), 2072-2083.

Shi, H., Liu, Y., Ding, A., Wang, W., & Sun, Y. (2023). Induced defense strategies of plants against Ralstonia solanacearum. Frontiers in Microbiology, 14, 1059799.

Silveira, E. B., Gomes, A., Ferraz, E., Maranhão, E. A., & Mariano, R. L. (1999). Identificação de progênies de tomateiro resistentes à murcha-bacteriana. Horticultura Brasileira, 17, 06-10.

Tsuzuki, M., Inoue, K., Kiba, A., Ohnishi, K., Kai, K., & Hikichi, Y. (2023). Infection route in tomato roots and quorum sensing of Ralstonia pseudosolanacearum strain OE1-1. Physiological and Molecular Plant Pathology, 101995.

Yuliar, YAN., & Toyota, K. (2015). Recent trends in control methods for bacterial wilt diseases caused by Ralstonia solanacearum. Microbes and Environments, 30: 1-11.