A Aclimatação de Cattleya nobilior Rchb. f. (Orchidaceae) em condições de campo em área de mata ciliar

Vaneça Rodrigues Lopes; Jaderson Roney Gomes de Oliveira; Davi Borges das Chagas; Fabyano Alvares Cardoso Lopes; Ronaldo Rodrigues Coimbra; Wagner de Melo Ferreira

doi:10.48017/dj.v9i4.3063

Autores/as

Vaneça Rodrigues Lopes Universidade Federal do Tocantins
Jaderson Roney Gomes de Oliveira Universidade Federal do Tocantins https://orcid.org/0000-0001-8374-992X
Davi Borges das Chagas Universidade Federal do Tocantins
Fabyano Alvares Cardoso Lopes Universidade Federal do Tocantins
Ronaldo Rodrigues Coimbra Universidad Federal de Tocantins
Wagner de Melo Ferreira Universidade Federal do Tocantins

DOI:

https://doi.org/10.48017/dj.v9i4.3063

Palabras clave:

Phorophytes, Cardinal points, reintrodução, Orquideas

Resumen

Este estudio tuvo como objetivo evaluar la supervivencia y el desarrollo de Cattleya nobilior, proveniente de cultivo in vitro, dispuesta según los puntos cardinales en los forófitos Acrocomia aculeata y Butia capitata, en un área de bosque ribereño en el bioma Cerrado en Porto Nacional, Tocantins, Brasil. La supervivencia se evaluó mediante el número de individuos vivos al final del estudio, y el desarrollo se evaluó mediante las siguientes variables: longitud del brote, número de hojas, brotes y raíces durante un período de doce meses. Se asignaron cuatro plantas a cada forófito, una por punto cardinal (norte, sur, este y oeste). El estudio reveló que la aclimatación de C. nobilior fue más exitosa en A. aculeata que en B. capitata, posiblemente debido a condiciones más favorables del tronco, especialmente durante la estación seca. La orientación de los forófitos hacia los puntos cardinales Norte y Oeste también influyó positivamente en la supervivencia y aclimatación de las orquídeas. La temperatura y la humedad resultaron ser factores clave durante el proceso, y la temporada de lluvias favoreció un mejor crecimiento y desarrollo. Por lo tanto, se destaca la importancia de considerar las características específicas de los forófitos y la necesidad de realizar investigaciones más detalladas para comprender la interacción entre las plantas hospedantes y las plantas asociadas.

Métricas

Cargando métricas ...

Biografía del autor/a

Vaneça Rodrigues Lopes, Universidade Federal do Tocantins

0000-0002-1059-9833; Mestranda, Programa de Pós-graduação em Biodiversidade Ecologia e Conservação, Universidade Federal do Tocantins. Tocantins. Porto Nacional, Tocantins (TO), Brasil. vaneca.lopes@uft.edu.br

Jaderson Roney Gomes de Oliveira, Universidade Federal do Tocantins

0000-0001-8374-992X; Doutorando em Biodiversidade e Biotecnologia pela Rede Bionorte, Universidade Federal do Tocantins. Palmas, Tocantins (TO), Brasil. jaderson.roney@gmail.com

Davi Borges das Chagas, Universidade Federal do Tocantins

0000-0001-5222-1030; Pesquisador do Herbário do Tocantins (HTO), Universidade Federal do Tocantins. Porto Nacional, Tocantins (TO), Brasil. davibchagas@uft.edu.br

Fabyano Alvares Cardoso Lopes, Universidade Federal do Tocantins

0000-0002-4565-9103; Professor do Programa de Pós-Graduação em Biodiversidade, Ecologia e Conservação, Universidade Federal do Tocantins. Porto Nacional, Tocantins (TO,) Brasil. flopes@uft.edu.br

Wagner de Melo Ferreira, Universidade Federal do Tocantins

0000-0002-7805-2180; “in memoriam” - Professor do Programa de Pós-Graduação em Biodiversidade, Ecologia e Conservação, Universidade Federal do Tocantins. Porto Nacional, Tocantins (TO). Brazil

Citas

Alvares, C. A., Stape, J. L., Sentelhas, P. C., De Moraes, G., Leonardo, J., & Sparovek, G. (2013). Köppen's Climate Classification Map for Brazil. Meteorologische Zeitschrift, 22(6), 711-728.

Ayres, M., Ayres Jr, M., Ayres, D. L., Santos, A. A. S. Bioestat 5.0 aplicações estatísticas nas áreas das ciências biológicas e médicas. Belém: IDSM, 2007.364p.

Barros, F. de, Vinhos, F., Rodrigues, V. T., Barberena, F. F. V. A., Frafa, C. N., Pessoa, E. N., Forster, W., Menini, N. F., Furtado, S. G., Nardy, C., Azevedo, C. O., & Guimarães, L. R. S. (2015). Orchidaceae. In Lista de Espécies da Flora do Brasil. Jardim Botânico do Rio de Janeiro. Disponível em: http://floradobrasil.jbrj.gov.br/jabot/floradobrasil/FB22653. Acesso em: 04 jun. 2021.

Chandra, S., Bandopadhyay, R., Kumar, V., & Chandra, R. (2010). Acclimatization of tissue cultured plantlets: From laboratory to land. Biotechnology Letters, 32(9), 1199-1205.

Dorneles, L. T., & Trevelin, V. (2011). Aclimatização e reintrodução de Cattleya intermedia Graham ex Hook (Orchidaceae) obtidas por propagação in vitro. Iheringia, Série Botânica, 66(2), 167-174.

Endres Júnior, D., Sasamori, M. H., Schmitt, J. L., & Droste, A. (2018). Survival and development of reintroduced Cattleya intermedia plants related to abiotic factors and herbivory at the edge and in the interior of a forest fragment in South Brazil. Acta Botanica Brasilica, 32(4), 555-566.

Ferreira, W. M., & Suzuki, R. M. (2008). O cultivo in vitro de orquídeas como alternativa para a preservação de espécies nativas ameaçadas de extinção. In M. I. B. Loiola, I. G. Baseia, & J. E. Lichston (Orgs.), Atualidades, desafios e perspectiva da botânica no Brasil (pp. 67-68). Natal: Imagem Gráfica.

Instituto Nacional de Meteorologia - INMET. (2024). Disponível em: http://www.inmet.gov.br/portal/index.php?r=bdmep/bdmep. Acesso em: 01/05/2024.

Kämpf, A. N. (2005). Produção comercial de plantas ornamentais (2ª ed.). Guaíba: Agrolivros.

Mayer, J. L. S., Ribas, L. L. F., Bona, C., & Quoirin, M. (2008). Anatomia comparada das folhas e raízes de Cymbidium Hort. (Orchidaceae) cultivadas ex vitro e in vitro. Acta Botanica Brasilica, 22(2), 323-332. https://doi.org/10.1590/S0102-33062008000200003.

Mayo, S. J., Bogner, J., & Boyce, P. C. (1997). The genera of Araceae. Continental Printing, Belgium.

Mendonça, R. C., Felfili, J. M., Walter, B. M. T., Silva Júnior, M. C., Rezende, A. V., Filgueiras, T. S., Nogueira, P. E., & Fagg, C. W. (2008). Flora vascular do cerrado: Checklist com 12.356 espécies. In S. M. Sano, S. P. Almeida, & J. F. Ribeiro (Eds.), Cerrado: Ecologia e flora (pp. 417-1279). Embrapa-CPAC, Planaltina.

Moreira, A. L., Silva, A. B., Santos, A., Reis, C. O. D., & Landgraf, P. R. C. (2013). Cattleya walkeriana growth in different micropropagation systems. Ciência Rural, 43, 1804-1810.

Oliveira, S. L. A. de, Silva, K. L. F., Oliveira, R. J. de, Souza, M. J. de, Oliveira, J. R. G. de, & Ferreira, W. de M. (2021). In vitro germination, initial development and acclimatization of Cattleya nobilior Rchb. f. (Orchidaceae): An approach to curb the eventual endangerment of this exuberant, near-threatened Cerrado species. Diversitas Journal, 6(2), 2167-2191. https://doi.org/10.17648/diversitas-journal-v6i2-1592.

Oliveira, J. R. G. (2018). Análise da multiplicação e desenvolvimento inicial in vitro, e aclimatização de Encyclia flava (LINDL.) Porto & Brade (Orchidaceae). Dissertação de Mestrado, Universidade Federal do Tocantins, Porto Nacional.

Pridgeon, A. M., Cribb, P. J., Chase, M. A., & Rasmussen, F. N. (2009). Genera Orchidacearum, Epidendroideae (Part Two) (5ª ed.). Oxford University Press.

Python Software Foundation. (2024). Python 3.11.4. Disponível em https://www.python.org

Ribeiro, J. F., & Walter, B. M. T. (2008). Fitofisionomias do bioma Cerrado. In S. M. Sano, S. P. Almeida, & J. F. Ribeiro (Eds.), Cerrado: Ecologia e flora (pp. 151-212). Embrapa-CPAC, Planaltina.

Schmidt, G., & Zotz, G. (2002). Inherently slow growth in two Caribbean epiphyte species: A demographic approach. Journal of Vegetation Science, 13(4), 527-534.

Seeni, S., & Latha, P. G. (2000). In vitro multiplication and eco-rehabilitation of the endangered Blue Vanda. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 61, 1-8.

Sherlock, E. M. (2009). Propagação in vitro de Encyclia alboxanthina Fowlie (Orchidaceae): Espécie endêmica da Chapada Diamantina-Bahia (Dissertação de Mestrado). Universidade Estadual de Feira de Santana.

Silva, A. B., Lima, P. P., Oliveira, L. E. S., & Moreira, A. L. (2014). In vitro growth and leaf anatomy of Cattleya walkeriana (Gardner, 1839) grown in natural ventilation system. Revista Ceres, 61, 883-890. http://dx.doi.org/10.1590/0034-737X201461060001.

Silva, C. S., Araújo, L. G., Sousa, K. C. I., Silva, D. M., Sibov, S. T., & Faria, P. R. (2017). Germinação e desenvolvimento in vitro de orquídea epífita do Cerrado. Ornamental Horticultura, 23(1), 96-100. http://dx.doi.org/10.14295/oh.v23i1.923.

Silva, E. F., Villa, F., & Pasqual, M. (2009). Meio de cultura Knudson modificado utilizado no cultivo in vitro de um híbrido de orquídea. Scientia Agraria, 10(4), 267-274. ISSN 1519-1125.

Silva, J. A. T. da., Hossain, M. M., Sharma, M., Dobránszki, J., Cardoso, J. C., & Songjun, Z. (2017). Acclimatization of in vitro-derived Dendrobium. Horticultural Plant Journal, 3(3), 110-124. http://dx.doi.org/10.1016/j.hpj.2017.07.009.

Slump, K. (2004). Lessons from the roots. Orchids Magazine, 74, 252-254.

Soares, J. S., Rosa, Y. B. C. J., Macedo, M. C., Sorgato, J. C., Rosa, D. B. C. J., & Rosa, C. B. C. J. (2012). Cultivo in vitro de Brassavola tuberculata (Orchidaceae) em meio de cultura alternativo suplementado com diferentes concentrações de açúcar e carvão ativado. Magistra, 24, 226-233.

Souto, J. S., Morimoto, J. M., Ferreira, W. M., Nakabashi, M., & Suzuki, R. M. (2010). Efeitos do ácido naftalenoacético no desenvolvimento in vitro de Cattleya bicolor (Orchidaceae). Revista Brasileira de Biociências, 8, 179-185.

Takane, R. J., Faria, R. T., & Altafin, V. L. (2006). Cultivo de orquídeas. Brasília: Editora LK.

Zandorá, A. P., Faria, R. T., Lone, A. B., & Hoshino, R. T. (2014). Substratos alternativos ao esfagno na aclimatização de plântulas de Arundina graminifolia “alba” (Orchidaceae). Revista Brasileira de Horticultura Ornamental, 20(1), 7-12.